IUBio GIL .. BIOSCI/Bionet News .. Biosequences .. Software .. FTP

<html>
<body>
Dear Masha,<br><br>
Alvinella and Paralvinella are not exactly Terebellidae, so this may not
be what you're looking for. However, they are closely related to them, so
Salva was right to point this literature to you. There are more papers on
alvinellids if you're interested, all suggesting internal fertilization,
but as far as I know, I think it's only indirect evidence. You can find
such papers in the regular databases, but if you wish, I can list them to
you.<br>
Regards<br>
Pierre<br><br>
<br>
At 01:12 25/04/2009, Salvador Herrando-Perez wrote:<br><br>
<blockquote type=cite class=cite cite=""><b>Hi Maua, please check if the
following references are of any use to you. I have ignored the Dani´s
papers on the topic since you may have them all. Regards, Salva<br>
</b><br>
Molecular analysis indicates gene flow among populations of Paralvinella
pandorae Desbruyeres and Laubier 1986 (Alvinellidae, Terebellida), a
polychaete annelid endemic to hydrothermal vents of the northeast
PacificAuthor(s): Knowles JD, Wenink E, Schult N, Tunnicliffe V, McHugh D
Source: MARINE ECOLOGY-AN EVOLUTIONARY PERSPECTIVE&nbsp;&nbsp;&nbsp;
Volume: 26&nbsp;&nbsp;&nbsp; Issue: 3-4&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages:
216-222&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published: SEP-DEC 2005&nbsp;&nbsp; Abstract:
The polychaete annelid Paralvinella pandorae Desbruyeres and Laubier 1986
is endemic to hydrothermal vents in the northeast Pacific, and is found
at almost all vents sites along the 500-km long Juan de Fuca ridge (JdF)
system. The sperm morphology of P. pandorae indicates that fertilization
occurs internally or in the worm's tube, and the maximum observed oocyte
size of 215 mu m suggests that a dispersive larval phase is short or
non-existent. Size frequency analyses of populations of P. pandorae
suggest continuous or semi-continuous recruitment of juveniles. Given Our
limited knowledge of the species' life history, we predicted that
populations of P. pandorae would exhibit a decline in genetic similarity
with increasing distance among populations along the JdE While our
attempts to use amplified fragment length polymorphisms to test this
prediction were not successful, our analysis of cytochrome oxidase I gene
sequences provided insights into the phylogeography of the species. For
31 individuals from five sites along the JdF there is little sequence
variation among individuals and no phylogeographic pattern among
haplotypes from populations separated by distances of Lip to 210 km.
These results indicate that gene flow occurs among all sites in the
analyses, i.e. despite the very limited dispersal potential inferred from
life history characteristics of this worm, there is no evidence for
isolation-by-distance across the geographical scale of the study.
Demersal larvae dispersed by near-bottom currents might explain the gene
flow among sites, as well as the establishment of populations of P.
pandorae at new vents within a year.<br>
<br>
Oogenesis characteristics in the hydrothermal vent polychaete Alvinella
pompejanaAuthor(s): Pradillon F, Gaill F Source: INVERTEBRATE
REPRODUCTION &amp; DEVELOPMENT&nbsp;&nbsp;&nbsp; Volume:
43&nbsp;&nbsp;&nbsp; Issue: 3&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages:
223-235&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published: JUL 2003&nbsp;&nbsp; Times Cited:
2&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; References: 35&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; Citation
Map&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; Abstract: The morphology of the female
genital tract and mechanisms of oogenesis were investigated through light
and transmission electron microscopy in the vent polychaete Alvinella
pompejana. We showed that the genital pore exhibits different
morphologies in males and females and can be used for sex identification.
The female genital tract consists of two oviducts that contain mature
oocytes and spermathecae, which may contain a few unfertilised oocytes,
and simultaneously spermatozoa. Ultrastructural analysis of both coelomic
and genital tract oocytes showed that vitellogenesis is mostly achieved
in the coelomic cavity, apparently without helper cells, and involves
autosynthetic mechanisms of yolk production. Such a mechanism suggests
that egg growth is slow. It is commonly admitted that hydrothermal
environments are unpredictable and highly variable, and thus, may favour
species that are able to produce eggs rapidly facing environmental
changes. As Alvinella pompejana does not seem to follow such a
reproductive pattern, we hypothesised that the reproductive process may
be considered as a two-step process where only the second one would be
directly influenced by the environment. First, coelomic vitellogenesis
would be a relatively slow process, regulated physiologically
independently of abrupt environmental changes. In the second step, mature
eggs would be selected and stored for further spawning and fertilisation,
at any time triggered by environmental cues or biological signal such as
sperm transfer.<br><br>
REPRODUCTIVE-BIOLOGY AND POPULATION-STRUCTURE OF THE DEEP-SEA
HYDROTHERMAL VENT WORM PARALVINELLA-GRASSLEI (POLYCHAETA, ALVINELLIDAE)
AT 13-DEGREES-N ON THE EAST PACIFIC RISEAuthor(s): ZAL F, JOLLIVET D,
CHEVALDONNE P, DESBRUYERES D Source: MARINE BIOLOGY&nbsp;&nbsp;&nbsp;
Volume: 122&nbsp;&nbsp;&nbsp; Issue: 4&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages:
637-648&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published: JUN 1995&nbsp;&nbsp; Times Cited:
39&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; References: 57&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;
Citation Map&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; Abstract: Paralvinella grasslei is a
polychaetous annelid living in the harsh, unstable and heterogeneous
environmental conditions found at deep-sea hydrothermal vent sites in the
eastern Pacific. The aim of this work was to examine the possible
influence of the reproductive biology of P. grasslei on the structure of
its populations. Maximum observed oocyte size inside the oviduct is 275
mu m, and fecundity is relatively low. Examination of gametes and young
specimens suggested a direct benthic development for this species. The
population structure of P. grasslei at 13 degrees N/EPR (EPR = East
Pacific Rise) revealed a discontinuous recruitment which seems to be
synchronized within vent sites and fields. The data also suggested the
occurrence of discrete breeding periods. P. grasslei probably reproduces
several times a year, with an apparent periodicity. Tidal signals could
be a possible cue for the coordination of the reproductive cycle. The
life-history of P. grasslei is discussed in light of the reproductive
biology of other terebellomorph polychaetes, and seems to be well adapted
for colonizing the unstable environment of hot vents. Two main hypotheses
can explain the dissemination processes of this species along axial
oceanic ridges. The influence of near-bottom currents occurring along the
central ''graben'' of the East Pacific Rise can be considered to account
for part of the transport of larvae and juveniles, but the observations
of polychaete erpochaetes on the test of hydrothermal bythograeid crabs
and evidence that crab migrations occur between vents also support the
possibility of zoochory for the dissemination of alvinellid
polychaetes.<br>
<br>
ULTRASTRUCTURE OF SPERMATIDS AND SPERMATOZOA IN RAMEX-CALIFORNIENSIS AND
NICOLEA-ZOSTERICOLA (TEREBELLIDAE, POLYCHAETA)Author(s): ROUSE GW, MCHUGH
D Source: OPHELIA&nbsp;&nbsp;&nbsp; Volume: 39&nbsp;&nbsp;&nbsp; Issue:
3&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages: 225-238&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published: AUG
1994&nbsp;&nbsp; Abstract: The ultrastructure of the spermatozoa and some
stages of spermiogenesis in Ramex californiensis Hartman, 1944 and
Nicolea zostericola (Orsted, 1844) is described. Both species brood
direct developing larvae, N. zostericola outside the tube in a jelly
mass, and R. californiensis inside the tube in a cocoon. In both species,
spermatids were seen in large groups of synchronously developing cells.
Each spermatid was connected via a cytoplasmic bridge to a central
cytophore. The acrosome initially developed at the posterior end of the
spermatid near the centrioles. It then migrated to the anterior end of
the sperm at the tip of the nucleus; in N. zostericola the migration was
much later than in R. californiensis. No microtubular activity was
involved in spermiogenesis. The mature sperm nuclei of R. californiensis
and N. zostericola were basically cylindrical and elongate, measuring 9
mum and 10 mum in length, respectively. In both species the acrosome was
bullet-shaped, although in N. zostericola the subacrosomal space was
proportionally much larger, and there were two regions of differing
electron density. There was no sperm midpiece in either species. Instead
the mitochondria lay in grooves along the posterior region of the
nucleus; 2 mitochondria in R. californiensis sperm and 4 mitochondria in
N. zostericola. The anchoring apparatus for the sperm of each species
consisted of both the proximal and distal centrioles, and a complex
satellite apparatus arising from the distal centriole. The morphology of
the sperm is compared with other polychaetes; functional aspects and
systematic implications are discussed. The close similarity of the sperm
between N. zostericola and R. californiensis does suggest a similar
fertilization mechanism is used by the two species. Until a phylogenetic
hypothesis for the Terebellidae is developed the evolutionary change in
sperm morphology and functional correlates with other factors in
reproduction cannot be determined.<br><br>
A COMPARATIVE-STUDY OF REPRODUCTION AND DEVELOPMENT IN THE POLYCHAETE
FAMILY TEREBELLIDAEAuthor(s): MCHUGH D Source: BIOLOGICAL
BULLETIN&nbsp;&nbsp;&nbsp; Volume: 185&nbsp;&nbsp;&nbsp; Issue:
2&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages: 153-167&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published: OCT
1993&nbsp;&nbsp; Abstract: The reproduction and development of four
species of terebellid polychaetes from the west coast of North America
were studied and compared with several other terebellid species to reveal
the covariation of life history traits in the group, and assess any
limitations on terebellid life history evolution that may be imposed by
ancestry or body design. The four species in the present study span the
range of reproductive and developmental modes known for the family
Terebellidae. Eupolymnia crescentis and Neoamphitrite robusta are both
free spawners that reproduce during discrete 3-month breeding periods. In
E. crescentis, oogenesis takes from 5 to 8 months and spawning occurs
from July to September, maximum oocyte diameter is 210 mum, and fecundity
reaches approximately 128,500 during a single breeding period. The E.
crescentis larva develops near the bottom for about 7 days before
settling as a five-setiger juvenile. Neoamphitrite robusta reproduces
from April to July after a 12-month oogenic cycle; oocytes in this
species measure up to 180 mum, and fecundity reaches approximately
830,000. The two brooders in the study, Ramex californiensis and Thelepus
crispus, brood their larvae in the maternal tube. T. crispus reproduces
continuously for at least 6 months, and has up to 51,500 larvae in a
single brood. The oocytes in this species (400 mum) give rise to larvae
that are brooded to the one-setiger stage and then emerge to undergo a
one-day planktonic period before the larvae settle and become juveniles
at eight setigers. Ramex californiensis reproduces continuously year
round; larvae are brooded in cocoons that are laid sequentially in the
tube, with up to 44 larvae in a single cocoon. Development from the 4 1 0
mum oocytes is direct, and juveniles have 11 setigers. Unlike E.
crescentis and N. robusta, in which oogenesis is synchronized within
individuals to produce a peak of large oocytes during the discrete
spawning period, R. californiensis and T. crispus females have a wide
range of oocyte sizes throughout the year. <br><br>
Correlation analysis and analysis of variance of reproductive and
developmental traits of these and several other terebellid species
revealed some expected trends. For example, egg size varies according to
the mode of reproduction (free spawning, extratubular brooding, or
intratubular brooding), and is also correlated with juvenile size.
However, egg size does not predict fecundity in terebellids when body
size is held constant, and brooding is not restricted to small-bodied
species. Indeed, the largest and smallest species in the study brood
their larvae intratubularly, suggesting that allometric constraints may
not be important in determining mode of reproduction in these
polychaetes. The Terebellidae is a diverse family found in all marine
habitats, yet all known terebellid larvae are non-feeding; this contrasts
with the occurrence of both planktotrophy and lecithotrophy in other
polychaete families, and leads to the proposal that larval development in
terebellids has been constrained during the evolution of the lineage. The
results of this study demonstrate that generalizations regarding complex
relationships among life history traits are often inappropriate. The need
for more comparative studies of marine invertebrate reproduction and
development, and the integration of phylogenetic analyses into the study
of life history evolution in marine invertebrates is
highlighted.<br><br>
LARVAL DEVELOPMENT OF POLYCHAETA FROM THE NORTHERN CALIFORNIA COAST V
RAMEX-CALIFORNIENSIS HARTMAN (POLYCHAETA, TEREBELLIDAE)Author(s): BLAKE
JA Source: BULLETIN OF MARINE SCIENCE&nbsp;&nbsp;&nbsp; Volume:
48&nbsp;&nbsp;&nbsp; Issue: 2&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages:
448-460&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published: MAR 1991&nbsp;&nbsp; Abstract: Ramex
californiensis is a small intertidal terebellid polychaete that lives in
rocky habitats on the northern California coast. The species is abundant
under colonies of encrusting tunicates in the low intertidal zone on
rocks protected from the surf. The tubes are formed of coarse mucoid
secretions covered with sand, shell, and algal fragments. Large
elongated, white eggs ranging from 270 to 330-mu-m (XBAR = 292-mu-m) are
deposited by females in capsules within the tubes. Up to 16 eggs or
embryos have been observed in a single capsule. One, two, or three
capsules may be found in a single tube. When multiple capsules are
present, the embryos contained in separate capsules are always at
different stages of development, indicating sequential fertilizations and
egg deposition. Pair formation between males and females was not
observed. Development is direct and occurs entirely within the capsules.
The earliest larval stages are covered with cilia and bear a pair of red,
granular eyes. The anterior and posterior ends elongate and the cilia
become restricted to an anterior band. The oral structures develop early,
with the differentiation of a ciliated vestibule and development of a
medial tentacle on the anterior end of the prostomium. The tentacle
assists movement within the capsule during their early development. Two
additional tentacles appear lateral to the original medial tentacle and
develop each a ciliated groove. The latest encapsulated stages have three
grooved tentacles, 10-11 segments (eight with capillary notosetae; none
with uncini), and a fully developed digestive tract containing remants of
yolk. Upon release from the capsule, an additional pair of tentacles
develops and uncini first appear on setiger 3. Juveniles were maintained
on cultures of unicellular algae covering the bottoms of the culture
dishes. The worms grazed upon these algae by sweeping their tentacles
over the bottom where they pick up the cells and transport them to the
vestibule. Juveniles secrete thin mucous tubes.<br><br>
Title: DIVERSITY IN REPRODUCTIVE-ORGANS AND REPRODUCTION IN PACIFIC
TEREBELLID POLYCHAETES <br><br>
Author(s): SMITH RI<br><br>
Source: AMERICAN ZOOLOGIST&nbsp;&nbsp; Volume: 29&nbsp;&nbsp; Issue:
4&nbsp;&nbsp; Pages: A117-A117&nbsp;&nbsp; Published: 1989<br><br>
A COMPARATIVE-STUDY OF REPRODUCTIVE ENERGETICS IN 2 POPULATIONS OF THE
TEREBELLID POLYCHAETE EUPOLYMNIA-NEBULOSA MONTAGU WITH DIFFERENT
REPRODUCTIVE MODESAuthor(s): GREMARE A Source: JOURNAL OF EXPERIMENTAL
MARINE BIOLOGY AND ECOLOGY&nbsp;&nbsp;&nbsp; Volume: 96&nbsp;&nbsp;&nbsp;
Issue: 3&nbsp;&nbsp;&nbsp; Pages: 287-302&nbsp;&nbsp;&nbsp; Published:
MAY 1986&nbsp;&nbsp; <br><br>
<br>
-----------------------------------------------------------------------------------------------------
<br><br>
Salvador Herrando-Pérez<br><br>
&gt;<br><br>
&gt; School of Earth and Environmental Science, Mawson Building <br><br>
&gt; University of Adelaide, South Australia 5005, Australia<br><br>
&gt;<br><br>
&gt; Phone: +61 8 8303 5254<br><br>
&gt; Fax: +61 8 8303 4347<br><br>
&gt; Email: salvador.herrando-perez@adelaide.edu.au<br><br>
&gt;
<a href="https://www.adelaide.edu.au/directory/salvador.herrando-perez">
https://www.adelaide.edu.au/directory/salvador.herrando-perez</a><br><br>
-----Original Message-----<br><br>
From: annelida-bounces@oat.bio.indiana.edu
[<a href="mailto:annelida-bounces@oat.bio.indiana.edu">
mailto:annelida-bounces@oat.bio.indiana.edu</a>] On Behalf Of ????
???????<br><br>
Sent: 24 April 2009 23:19<br><br>
To: Annelida@magpie.bio.indiana.edu<br><br>
Subject: [Annelida] Internal fertilization in Terebellidae<br><br>
Dear collegues,<br><br>
Did anybody anywhere met any information on casas of internal
fertilization in Terebellidae.<br><br>
I would be greatly appreciated for any kind of information.<br><br>
Best regards,<br><br>
Masha<br><br>
Masha Plyuscheva, PhD<br><br>
Recearch Fellow<br><br>
Center for Advanced Studies (CEAB, CSIC)<br><br>
Acc Cala St. Francesc 14<br><br>
17300 Blanes (Girona)<br><br>
Catalunia (Spain)<br><br>
Ph: + 34 972 336 101<br><br>
Fax: + 34 972 337 806<br><br>
_______________________________________________<br><br>
Annelida mailing list<br><br>
Post: Annelida@net.bio.net<br><br>
Help/archive:
<a href="http://www.bio.net/biomail/listinfo/annelida">
http://www.bio.net/biomail/listinfo/annelida</a><br><br>
Resources:
<a href="http://www.annelida.net">http://www.annelida.net</a><br>
_______________________________________________<br>
Annelida mailing list<br>
Post: Annelida@net.bio.net<br>
Help/archive:
<a href="http://www.bio.net/biomail/listinfo/annelida" eudora="autourl">
http://www.bio.net/biomail/listinfo/annelida</a><br>
Resources:
<a href="http://www.annelida.net/" eudora="autourl">
http://www.annelida.net</a></blockquote></body>
<br>

<body>
<br>
<u>PLEASE NOTE NEW E-MAIL ADDRESS / CHANGEMENT D'ADRESSE E-MAIL<br><br>
</u>Pierre Chevaldonné<br>
CNRS - UMR DIMAR, Station Marine d'Endoume<br>
Centre d'Océanologie de Marseille<br>
Rue de la Batterie des Lions<br>
13007 Marseille, France<br><br>
Tel: 33 4 91 04 16 59<br>
Fax: 33 4 91 04 16 35<br>
<b>E-mail: pierre.chevaldonne@univmed.fr<br>
</b>Web page:
<a href="http://www.com.univ-mrs.fr/DIMAR/admin/detailperso.php?nom=Pierre:CHEVALDONNE" eudora="autourl">
http://www.com.univ-mrs.fr/DIMAR/admin/detailperso.php?nom=Pierre:CHEVALDONNE<br>
</a>Dimar Web page:
<a href="http://www.com.univ-mrs.fr/DIMAR/" eudora="autourl">
http://www.com.univ-mrs.fr/DIMAR/</a> </body>
</html>

Send comments to us at archive@iubio.bio.indiana.edu